УДК: 578:576.8.097.37:[54-145:615.37]:544.722.8
Год издания: 2016
Вирусинактивация растворов иммуноглобулина человека сольвент/детергентным методом
Расюк Е.Д., Еремин В.Ф., Красочко П.А., Белькевич А.А., Федченко Е.А., Згировская А.А., Венско Д.Г.
Рубрики: 34.25.05, 76.31.35
Республиканский научно-практический центр трансфузиологии и медицинских биотехнологий
Тема НИР: «Разработка новых методов вирусной инактивации лекарственных средств на основе альбумина и иммуноглобулинов».
Сроки выполнения НИР: январь 2014 г. — декабрь 2015 г.
Научный руководитель: д-р мед. наук, проф. Г.Я. Хулуп.
Соисполнители: ГУ «Республиканский научно-практический центр эпидемиологии и микробиологии», Республиканское научно-исследовательское дочернее унитарное предприятие «Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского».
Источник финансирования: госбюджет.
В производственной трансфузиологии основной целью является обеспечение инфекционной безопасности препаратов крови. ВОЗ рекомендуется использование как минимум двух методов вирусинактивации при производстве препаратов на основе плазмы человека. В настоящее время в Республике Беларусь не применяются методы вирусинактивации в рамках существующих производств препаратов на основе иммуноглобулинов человека. Таким образом, данная работа выполнена с целью создания и утверждения лабораторно-технологического регламента проведения вирусинактивации иммуноглобулина с возможностью его последующего внедрения в производство лекарственных средств (ЛС).
Новизна работы. Работы по определению оптимальных условий вирусинактивации растворов иммуноглобулина человека, а также расчету эффективности данного процесса в Республике Беларусь ранее не проводились.
Материалы и методы. В качестве модельных вирусов использовали следующие: ВИЧ (вирус иммунодефицита человека)-1, вирус бычьей диареи (ВБД) как модельный вирус гепатита С, вирус болезни Ауески (ВБА) как модельный вирус гепатита В.
Для накопления вируса ВИЧ-1 использовали перевиваемые Т-лимфобластоидные линии клеток МТ-4 (Т-клетки человека, трансформированные путем сокультивирования с инфицированными HTLV-1 лимфоцитами) и CEMSS (Т-лимфобластоидная линия клеток человека, полученная G.E. Foley et al. и клонированная P.L. Naraetal). Динамику инфекционного процесса контролировали c помощью инвертированного светового микроскопа «Nicon Eclipse TS 100» с учетом цитодеструкции клеток (образование многоядерных гигантских клеток-синцитиев) и положительной реакции непрямой иммунофлюоресценции (НИФ).
Для накопления вируса болезни Ауески свиней использовали перевиваемую линию клеток ВНК-21 (почка новорожденного сирийского хомячка), полученную из коллекции научно-производственного Республиканского унитарного предприятия «Диалек» (№ 03/1288 от 24.06.2008). Титр вируса определяли согласно методике OIE Trrestrial Manual.
Для накопления вируса диареи крупного рогатого скота использовали перевиваемую линию клеток МDBK (почка быка), полученную из коллекции научно-производственного Республиканского унитарного предприятия «Диалек» (№ 03/1288 от 24.06.2008). Титр вируса определяли согласно методике OIE Trrestrial Manual.
Содержание иммуноглобулинов определяли фармакопейным методом (Государственная Фармакопея РБ II, 2.2.31) зонального электрофореза с использованием носителя ацетата целлюлозы на приборе для электрофореза.
Для выявления неполных антител в исследуемом образце иммуноглобулина использовали фармакопейный (Государственная Фармакопея РБ, 2.7.1) иммунохимический метод: пробу Кумбса.
Остаточное количество Тритона Х-100 определяли спектрофотометрическим методом с предварительной твердофазной экстракцией.
Остаточное количество ТНБФ (три-н-бутилфосфат) изучали методом газовой хроматографии.
Пирогенность и аномальную токсичность конечного лекарственного средства оценивали согласно соответствующим фармакопейным статьям РНПЦ трансфузиологии и медицинских биотехнологий.
В ходе исследования установлено: метод сольвент/детергентной обработки растворов иммуноглобулина человека подтвердил свою эффективность в отношении ВИЧ-1, а также модельных вирусов гепатита В и гепатита С (ВБА и ВБД соответственно). Снижение титра вируса ВИЧ-1 составило ≥6,0 lg, ВБА ≥7,7 lg и ВБД ≥6,8 lg.
Содержание иммуноглобулина в растворе, прошедшем сольвент/детергентную обработку, составило не менее 99,9% от общего белка и соответствует требованиям ФСП РБ 0943-11.
Специфическая активность антирезус анти-D антител в процессе сольвент/детергентной обработки сохранилась на 100% и соответствует требованиям ФСП РБ 0943-11.
Используя данные, полученные при определении остаточного количества ТНБФ в растворе иммуноглобулина 10% путем газовой хроматографии, рассчитали концентрацию вещества, которая составила 13,0 мкг/мл. Остаточное количество сольвента соответствует международным нормам 3-25 мкг/мл.
Остаточное количество Тритона Х-100 в растворе иммуноглобулина 10%, определенное спектрофотометрическим методом, составило 9,12 мкг/мл, что соответствует международным нормам 3-25 мкг/мл.
По результатам анализа на аномальную токсичность и пирогенность ЛС признано нетоксичным и апирогенным.
По результатам анализа на пирогенность лекарственное средство признано апирогенным.
Вывод. Сольвент/детергентная обработка препаратов иммуноглобулинов является эффективным методом полной инактивации модельных вирусов.
В качестве выходной продукции был составлен лабораторно-технологический регламент - «ВИРУСИНАКТИВАЦИЯ РАСТВОРА ИММУНОГЛОБУЛИНА ЧЕЛОВЕКА». Данный регламент позволяет внедрять сольвент/детергентную обработку растворов иммуноглобулина человека в существующие и будущие производства лекарственных средств на основе иммуноглобулина в Республике Беларусь.
Вид патентной защиты: отсутствует, планируется подача заявки.
Область применения: производственная трансфузиология.
Рекомендации по использованию: данная технология вирусной инактивации рекомендована для внедрения в производство лекарственных средств на основе белков плазмы крови в организации-разработчике.
Предложения по сотрудничеству: совместные исследования по данной тематике.